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公開番号2023073997
公報種別公開特許公報(A)
公開日2023-05-26
出願番号2022181704
出願日2022-11-14
発明の名称循環RNAプラットフォーム、その用途、および操作されたDNAからの製造プロセス
出願人マーティン ウィリアムス,エスワイティーイー.バイオ インコーポレイテッド
代理人弁理士法人信栄事務所
主分類C12N 15/63 20060101AFI20230519BHJP(生化学;ビール;酒精;ぶどう酒;酢;微生物学;酵素学;突然変異または遺伝子工学)
要約【課題】遺伝子操作されたDNAから環状RNAを製造するプロセス、得られる真核細胞内での効率的な翻訳が可能な環状RNAプラットフォーム、およびそれらの使用を提供する。
【解決手段】操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNAであって、線形化制限酵素、細菌選択システム、および細菌複製起点を含む合成DNA骨格、ならびにRNAポリメラーゼプロモーター、環状化配列、5’DNAスペーサー、制限酵素認識配列を、特定の順序で含む、少環状RNAモジュール足場、翻訳開始配列、第2の制限酵素認識配列、少なくとも1つのコード配列、第3の制限酵素認識配列、3’DNAスペーサー、および2番目の環状化配列を含み、前記環状化配列は、核酸に相補的な相同領域配列および/またはRNAライゲーションが可能なタンパク質ベースのシステムを含む、操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNAを提供する。
【選択図】図1
特許請求の範囲【請求項1】
以下を含む操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNA:
少なくとも2つの線形化制限酵素(LRE)、少なくとも1つの細菌選択システム、および少なくとも1つの細菌複製起点を含む合成DNA骨格、および;
少なくとも 1 つの RNA ポリメラーゼ プロモーター、少なくとも 1 つの環状化配列 (circSEQ1)、少なくとも 1 つの 5’ DNA スペーサー、少なくとも 1 つの制限酵素認識配列 (MCS1) を次の順序で含む、少なくとも 1 つの環状 RNA モジュール足場、少なくとも1つの翻訳開始配列、少なくとも第2の制限酵素認識配列(MCS2)、少なくとも1つのコード配列、少なくとも第3の制限酵素認識配列(MCS3)、少なくとも1つの3’DNAスペーサー、および少なくとも1つの2 番目の環状化シーケンス (circSEQ2);
ここで、前記環状化配列は、核酸に相補的な相同領域配列および/またはRNAライゲーションが可能なタンパク質ベースのシステムを含み、前記システムは、RNAライゲーションDNAzyme媒介環状化システム、CRISPR/dCas9-DNAからなる群から選択される、 -リガーゼ媒介環状化システム、または自己スプライシングイントロン-エクソン媒介環状化システム。
続きを表示(約 3,100 文字)【請求項2】
細菌選択系が、細菌内で抗生物質耐性遺伝子を発現することができる転写ユニットを含む、請求項1に記載の操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNA。
【請求項3】
抗生物質耐性遺伝子が、アンピシリン耐性遺伝子、カナマイシン耐性遺伝子、クロラムフェニコール耐性遺伝子、ゲンタマイシン耐性遺伝子、スペクチノマイシン耐性遺伝子、ストレプトマイシン耐性遺伝子、カルベニシリン耐性遺伝子、ブレオマイシン耐性遺伝子、エリスロマイシン耐性遺伝子、テトラサイクリン耐性遺伝子、ポリミキシン B 耐性遺伝子。
【請求項4】
細菌の複製起点が、pMB1起点、pMB1*誘導体起点、pBR322起点、ColE1起点、ColE1*派生起点およびF1起点からなる群から選択される、請求項1に記載の操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNA。
【請求項5】
RNAポリメラーゼプロモーターがウイルス性であり、T7 RNAポリメラーゼプロモーター、SP6 RNAポリメラーゼプロモーター、T3 RNAポリメラーゼプロモーター、T6 RNAポリメラーゼプロモーター、T4 RNAからなる群から選択される、請求項1に記載の操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNA。ポリメラーゼ プロモーター、および K11 RNA ポリメラーゼ プロモーター。
【請求項6】
請求項1に記載の操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNAであって、
- 少なくとも1つの環状RNAモジュール足場の少なくとも2つの環状化配列の第1の環状化配列(circSEQ1)は、少なくとも、第1の制限酵素認識配列(RE1A)、第1の相同性領域(HR1B)に作動可能に連結されて構成される、置換された自己スプライシングおよび自己触媒グループ I イントロン - エクソン システムに由来するエクソン セグメント (エクソン I) およびイントロン セグメント (イントロン I)、第 2 の制限酵素認識配列 (RE1B)、および第 2 の相同領域 (HR1A)。と、
-少なくとも1つの環状RNAモジュール足場の少なくとも2つの環状化配列の第2の環状化配列(circSEQ2)は、少なくとも:第1の制限酵素認識配列(RE2A)に作動可能に連結された第1の相同領域(HR2B)、置換された自己スプライシングおよび自己触媒グループ I イントロン - エクソン システムに由来するエクソン セグメント (エクソン II) およびイントロン セグメント (イントロン II)、2 番目の相同領域 (HR2A) および 2 番目の制限酵素認識配列 (RE2B)。
【請求項7】
請求項6に記載の操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNAであって:
- 第1の環状配列circSEQ1の第1の相同領域HR1Aは、第2の環状配列circSEQ2の第2の相同領域HR2Aに相補的である。と、
- 第1の環状化配列cirSEQ1の第2の相同性領域HR1Bは、第2の環状化配列cirSEQ2の第1の相同性領域HR2Bに相補的である。
【請求項8】
少なくとも以下の工程を含む環状RNAの製造方法:
プラスミドに含まれる細菌選択系によって組換えクローンを選択する工程;
得られた組換え細菌を成長条件でのインキュベーションに供して、適切な分子量を生成するために操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミド DNA の複製を可能にする。
得られた操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミド DNA分子を分離および精製する。
ライゲーションからなる群から適切なRNAライゲーションシステムを選択すること;
精製された操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミド DNA を線形化制限酵素 (LRE ) で消化する。
操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNA の線形化された環状 RNA モジュール足場を精製します。
RNA分子を生成するために、精製された線状化された環状RNAモジュール足場をインビトロ転写反応に供する工程;
線状 RNA 分子を選択した RNA ライゲーション システムにかける。と、
得られた環状 RNA を精製します。
【請求項9】
RNAライゲーションシステムがRNAライゲーションDNAザイムから選択される場合、ステップdの後に、そのcirSEQ領域(circSEQ1およびcircSEQ2)において親円形の共有結合的に閉じた合成プラスミドDNAをトリミングするステップをさらに含む、請求項8に記載の環状RNAを製造するためのプロセス。 CRISPR/dCas9/リガーゼ。
【請求項10】
請求項9に記載の環状RNAの製造方法であって、前記環状RNAの製造方法は、
a.精製された操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミド DNA を RE1A制限酵素および RE1B制限酵素で消化して、エクソン I、イントロン I、および HR1B セグメントを含む最初の circSEQ 領域 (circSEQ1) 内の DNA の一部を除去し、続いてゲル化する-circSEQ1 でトリミングされた線形化された親円形の共有結合的に閉じた合成プラスミドDNA の電気泳動精製。
b.ゲル電気泳動で精製されたcircSEQ1トリミングされた線形化された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNAを再結合します。
c.circSEQ1でトリミングされた親環状共有結合合成プラスミドDNAを適切な細菌株に形質転換し、親プラスミドに含まれる細菌選択システムによって組換えクローンを選択すること、
d.得られた circSEQ1 トリミングされた親環状共有結合閉鎖合成プラスミド DNA分子を分離および精製します。
e.circSEQ1 でトリミングされた親環状共有結合閉鎖合成プラスミド DNA を RE2A制限酵素および RE2B制限酵素で消化して、エクソン II、イントロン II、および HR2A セグメントを含む 2 番目の circSEQ 領域 (circSEQ2) 内の DNA の一部を除去し、続いてゲル化します。 circSEQ1/2 トリミングされた線形化された親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNA の電気泳動精製。
f.ゲル電気泳動で精製されたcircSEQ1 / 2でトリミングされた親環状共有結合閉鎖合成プラスミドDNA分子を再連結します。
g.circSEQ1/2 でトリミングされた親環状共有結合合成プラスミド DNA を適切な細菌株に変換し、親プラスミドに含まれる細菌選択システムによって組換えクローンを選択します。と
h.操作された親環状共有結合閉鎖合成プラスミド DNA を circSEQ1/2 トリミング領域で分離および精製します。
(【請求項11】以降は省略されています)

発明の詳細な説明【技術分野】
【0001】
本発明は、一般に、環状RNA分子を生成する可能性を有する遺伝子操作されたDNA技術に関し、特に、遺伝子操作されたDNAから環状RNAを製造するプロセス、得られる真核細胞内での効率的な翻訳が可能な環状RNAプラットフォーム、およびそれらの使用に関する。
続きを表示(約 3,000 文字)【背景技術】
【0002】
リニア RNA
核酸コード化薬物の概念は、20 年以上前に、 in vitroで転写された (IVT) メッセンジャー RNA (mRNA) またはプラスミド DNA (pDNA) をマウスの骨格筋に直接注入すると、コードされたタンパク質。当時、mRNA は DNA よりも安定性が低いため、mRNA ベースの医薬品は開発されていなかったため、この分野は DNA ベースの技術に焦点を当てていました。それにもかかわらず、mRNA は 1961 年の発見以来、いくつかの疾患について一貫した研究の対象となってきました。
【0003】
mRNA の発見後の最初の数十年間、主な焦点は真核細胞内のこれらの分子の構造的および機能的側面と代謝を理解することでした。また、これらの数十年間で、mRNA 工学用に作成されたいくつかのツールにより、これらの分子はより広範な研究コミュニティにとってよりアクセスしやすくなりました。 1990 年代に、mRNA 分子の前臨床調査が開始され、その結果、長年にわたって蓄積されたこの知識により、最近の科学的および技術的進歩により、mRNA に関連する障害のいくつかに対処し、克服することが可能になりました。高レベルのリサイクルまたはターンオーバーの対象となる生物学的分子の)および望ましくない免疫原性。
【0004】
IVT mRNA ベースの治療と、pDNA などの他の核酸ベースの治療との間には、いくつかの重要な違いがあります。 IVT mRNA分子は、機能するために核に入る必要はなく、細胞質に到達すると、これらの分子はすぐに翻訳されます。代わりに、pDNA は核に到達して mRNA に転写される必要があり、mRNA は次に細胞質に輸送されて翻訳される必要があります。さらに、pDNA やウイルスベクターとは異なり、mRNAは宿主ゲノムに組み込まれる可能性がないため、挿入変異誘発のリスクが回避されます。それは、真核生物のゲノムに豊富にあるが、異なる経路によって強くサイレンシングされる配列である転移因子のレトロトランスクリプターゼおよびインテグラーゼの作用によって媒介される非標準的なイベントによってのみ可能であり、この可能性は他の細胞mRNAの可能性と同じです。 .いくつかの医療および製薬用途では、IVT mRNA が短期間 (約 1 週間) のみ活性であり、その後自然に完全に分解されることが有利です。さらに、IVT mRNA の製造は簡単で安価であるため、IVT mRNA ベースの治療法が最近大きな関心を集めています。
【0005】
IVT mRNA は、がん、感染症、心臓病学、内分泌学、および血液学の治療および予防分野において、広範な前臨床および臨床研究を受けてきました。 IVT mRNA ベースの治療法の背後にある主な概念は、特定の疾患状態を予防または変更するために患者の細胞、組織、または臓器に遺伝子コード配列を導入することです。
【0006】
IVT mRNA を使用するには 2 つのアプローチがあります。 1 つのアプローチは、IVT mRNA をex vivoで患者の細胞に導入することです(たとえば、細胞が以前に患者の体から抽出されている場合)。そして、これらの一過性にトランスフェクトされた細胞は、患者に再投与されます。もう 1 つのアプローチは、筋肉内注射や腫瘍内送達などのさまざまな投与経路を使用して、IVT-mRNA 分子を患者の細胞にin vivo投与することです。どちらのアプローチも、感染症などのいくつかの病気の治療と予防、またはがんなどの遺伝性疾患の治療に使用されています。
【0007】
mRNA分子が細胞質内に入ると、薬理学的に活性な産物であるコード化されたタンパク質が、トランスフェクトされた細胞の自然な機構を使用して翻訳されます。 IVT で生成された mRNA は、真核細胞由来の天然に存在し、成熟し、処理された内因性 mRNA 分子に似るように設計されています。その結果、IVT mRNA は一本鎖であり、5’ キャップ、開始コドンと停止コドンが隣接し、非翻訳領域も隣接するオープン リーディング フレーム (ORF) を持ち、最後に 3’ ポリ (A) テールを持ちます。これらの分子は、スプライシングが行われる細胞内区画である核を通過しないため、イントロンは望ましくありません。
【0008】
は、線形化されたプラスミドまたは線形 PCR 産物である DNA テンプレートからのin vitro転写反応によって無細胞系で合成されます。 DNA テンプレートは、5’ キャップを除くすべての構造要素と機能要素をエンコードします。 IVTは、ヌクレオチドの存在下でT7、SP6、T4およびT3ファージRNAポリメラーゼを用いて行うことができ、転写後、ワクシニアキャッピング酵素などのキャッピング酵素を用いてRNAを酵素的にキャッピングする。次に、DNA鋳型をDNase消化に供し、得られたmRNA分子を当技術分野で周知の方法によって精製する。
【0009】
IVT mRNAの薬力学的活性は細胞質で行われます。核内で産生され、核外輸送によって細胞質に入る内因性mRNAとは対照的に、IVT mRNAは細胞の外側から細胞質に入る必要があります。
【0010】
IVT mRNA の細胞質バイオアベイラビリティは、細胞外空間に豊富に存在する非常に活性なユビキタス RNase と細胞膜による急速な分解によって制限され、負に帯電した mRNA 分子の細胞質への侵入を妨げます。真核細胞は、裸の mRNA 分子を積極的に飲み込むことができます。ただし、ほとんどの細胞タイプでは、この取り込み率は最小限です (10,000 分子に 1 未満)。患者の細胞への IVT mRNA 分子のトランスフェクションは、mRNA 分子を RNase による分解から保護し、細胞取り込みプロセスにも役立つポリマーまたは脂質ナノ粒子と複合体を形成することにより、大幅に改善できます。あるいは、インビトロ、インビボ、および細胞へのエクスビボmRNA導入に使用できるエレクトロポレーションなどの他の技術があります。
IVT mRNA が細胞質内に入ると、その薬理学は、内因性 mRNA の安定性と翻訳を調節するのと同じ複雑な細胞メカニズムによって支配されます。 IVT mRNA から翻訳されたポリペプチドは、翻訳後修飾を受けることができ、その後、成熟タンパク質は生物活性化合物と見なされます。 IVT mRNA およびタンパク質産物の半減期は、mRNA ベースの治療薬物動態の重要な決定要因です。
(【0011】以降は省略されています)

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